外观与性状：
白色球状凝胶
包装规格：
100mL 500mL in poly bottle
产品简介：
琼脂糖凝胶CL-6B是在琼脂糖凝胶6B的基础上通过交联使微球的刚性增强，理化性能提高，有利用于工业生产。该介质用于生物大分子的凝胶层析。
本品呈白色球状凝胶，无嗅、无味、无肉眼可见杂质。具有很高的化学稳定性、高流速、较好的机械性能、可多次重复使用等特点，非特异性吸附低，回收率高，可用有机溶剂及1-2mol/L的NaOH在位清洗，适用于工业规模生产，广泛用于生物制药和生物工程下游蛋白质、核酸及多肽的凝胶色谱纯化。
项目 指标
基质 6%交联琼脂糖
排阻极限 10000-4×106 (球蛋白)
形状 球形
料径 45 - 165 μm
最高流速 30cm/h*
耐热 pH7水中120°C 20min
耐压 0.025 MPa
pH 稳定性 3-13(长时间)，2-14(短时间，在位清洗)
化学稳定性 可耐8mol/L尿素、6mol/L盐酸胍;可耐有机溶剂，如乙醇、DMF、THF、DMS、CH3Cl、丙酮、二 甲基甲酰胺、二氯乙烷、吡啶、乙腈等。
*检测条件: 层析柱 10mm×300mm 柱床高 15cm，25°C，流动相为 0.1mol/LNaCl。
本品呈白色球状凝胶，无嗅、无味、无肉眼可见杂质。具有很高的化学稳定性、高流速、较好的机械性能、可多次重复使用等特点，非特异性吸附低，回收率高，可用有机溶剂及1-2mol/L的NaOH在位清洗，适用于工业规模生产，广泛用于生物制药和生物工程下游蛋白质、核酸及多肽的凝胶色谱纯化。
项目 指标
基质 6%交联琼脂糖
排阻极限 10000-4×106 (球蛋白)
形状 球形
料径 45 - 165 μm
最高流速 30cm/h*
耐热 pH7水中120°C 20min
耐压 0.025 MPa
pH 稳定性 3-13(长时间)，2-14(短时间，在位清洗)
化学稳定性 可耐8mol/L尿素、6mol/L盐酸胍;可耐有机溶剂，如乙醇、DMF、THF、DMS、CH3Cl、丙酮、二 甲基甲酰胺、二氯乙烷、吡啶、乙腈等。
*检测条件: 层析柱 10mm×300mm 柱床高 15cm，25°C，流动相为 0.1mol/LNaCl。
操作步骤：
一：装柱：
凝胶过滤介质的使用对装柱的要求较高，为了保证分离效果，一般通过柱子上加一个装柱器来使分离柱装满凝胶，或采用带有轴向加压装置的柱子。凝胶柱床一般高于60cm。装柱效果可用染料或丙酮-水溶液进行检验。以下过程为通用介质装填过程。若为带有轴向加压装置的柱子，可在柱床稳定后将柱床压紧，接好管路。
1：让所有的材料和试剂达到室温。配制缓冲液。凝胶层析上样、平衡和洗脱只用一种低盐浓度的缓冲液。
2：选择一根一定直径的柱子，长约30-60cm,根据柱子大小取所需量的凝胶(约为柱床体积的1.15 倍)， 清洗掉20%乙醇，抽干，用缓冲液(按凝胶:缓冲液=3:1 的比例)配成匀浆。
3：将柱内及柱子底端用水或缓冲液润湿并保持一小段液位(液面略高于滤膜)，务必使底端无气泡。
4：用玻璃棒引导匀浆沿着柱内壁一次性倒入柱内，注意勿使产生气泡。打开柱子出液口，使凝胶在柱内 自由沉降，连结好柱子顶端柱头。
5：打开蠕动泵，让缓冲液用使用时流速的1.33倍的流速流过，使柱床稳定。用缓冲液平衡柱子，到柱床稳定。
6：最好用一个装柱器辅助装柱。装完后柱床上端轻轻刮平，上好柱头。
二：平衡：让缓冲液以一定流速流过柱子，到流出液电导和 pH 不变。
三：上样
1：样品用缓冲液配制，浑浊样品要离心过滤后上样。含盐量过大、浓度过小的样品要先做处理，再上样。
2：介质对样品组分的分离是按组分分子量大小进行的，分子量大的先流出来。
3：上样体积约为柱体积的 1-2%，越小分离越好
四：洗脱：用缓冲液洗脱，洗脱中保持流速、缓冲液组成不变。
五：再生：一般用缓冲液洗到平衡，可再次使用。
六：在位清洗
1：对于以离子键结合上去的蛋白，可以用 2M Nacl 去除。
2：对沉淀蛋白、对以疏水性结合的蛋白或脂类，可用 1M NaOH 去除。
3：对强疏水性结合的蛋白、脂类等，用 4~10 倍柱体积的 70%乙醇或 30%异丙醇清洗，但要注意有机溶剂的浓度以梯度的方式逐渐增加，否则容易产生气泡。
4：清洗完毕后，用至少 3 倍缓冲液平衡柱子。
七：注意在装柱、使用和保存柱子的时候，要避免柱子流干，气泡进入。
八：去热源：用0.5M 的氢氧化钠清洗柱子5-6 小时或用0.1M 的氢氧化钠 24 小时。或用以下方法步骤去除。
1：2 倍柱体积的70%乙醇。
2：2 倍柱体积 50mM Tris-HCl pH7.5。
3：1倍柱体积4M尿素。
4：3倍柱体积的Tris 缓冲液+0.1M Nacl。
以上缓冲液都在无热源的双蒸水中配制。
九：消毒：用 0.5-1M NaOH 室温下洗 8-10 倍柱体积，初始缓冲液平衡柱子。
凝胶过滤介质的使用对装柱的要求较高，为了保证分离效果，一般通过柱子上加一个装柱器来使分离柱装满凝胶，或采用带有轴向加压装置的柱子。凝胶柱床一般高于60cm。装柱效果可用染料或丙酮-水溶液进行检验。以下过程为通用介质装填过程。若为带有轴向加压装置的柱子，可在柱床稳定后将柱床压紧，接好管路。
1：让所有的材料和试剂达到室温。配制缓冲液。凝胶层析上样、平衡和洗脱只用一种低盐浓度的缓冲液。
2：选择一根一定直径的柱子，长约30-60cm,根据柱子大小取所需量的凝胶(约为柱床体积的1.15 倍)， 清洗掉20%乙醇，抽干，用缓冲液(按凝胶:缓冲液=3:1 的比例)配成匀浆。
3：将柱内及柱子底端用水或缓冲液润湿并保持一小段液位(液面略高于滤膜)，务必使底端无气泡。
4：用玻璃棒引导匀浆沿着柱内壁一次性倒入柱内，注意勿使产生气泡。打开柱子出液口，使凝胶在柱内 自由沉降，连结好柱子顶端柱头。
5：打开蠕动泵，让缓冲液用使用时流速的1.33倍的流速流过，使柱床稳定。用缓冲液平衡柱子，到柱床稳定。
6：最好用一个装柱器辅助装柱。装完后柱床上端轻轻刮平，上好柱头。
二：平衡：让缓冲液以一定流速流过柱子，到流出液电导和 pH 不变。
三：上样
1：样品用缓冲液配制，浑浊样品要离心过滤后上样。含盐量过大、浓度过小的样品要先做处理，再上样。
2：介质对样品组分的分离是按组分分子量大小进行的，分子量大的先流出来。
3：上样体积约为柱体积的 1-2%，越小分离越好
四：洗脱：用缓冲液洗脱，洗脱中保持流速、缓冲液组成不变。
五：再生：一般用缓冲液洗到平衡，可再次使用。
六：在位清洗
1：对于以离子键结合上去的蛋白，可以用 2M Nacl 去除。
2：对沉淀蛋白、对以疏水性结合的蛋白或脂类，可用 1M NaOH 去除。
3：对强疏水性结合的蛋白、脂类等，用 4~10 倍柱体积的 70%乙醇或 30%异丙醇清洗，但要注意有机溶剂的浓度以梯度的方式逐渐增加，否则容易产生气泡。
4：清洗完毕后，用至少 3 倍缓冲液平衡柱子。
七：注意在装柱、使用和保存柱子的时候，要避免柱子流干，气泡进入。
八：去热源：用0.5M 的氢氧化钠清洗柱子5-6 小时或用0.1M 的氢氧化钠 24 小时。或用以下方法步骤去除。
1：2 倍柱体积的70%乙醇。
2：2 倍柱体积 50mM Tris-HCl pH7.5。
3：1倍柱体积4M尿素。
4：3倍柱体积的Tris 缓冲液+0.1M Nacl。
以上缓冲液都在无热源的双蒸水中配制。
九：消毒：用 0.5-1M NaOH 室温下洗 8-10 倍柱体积，初始缓冲液平衡柱子。
保存条件：
2-8℃
注意事项：
1：产品应密封贮存在 4°C-25°C(保存溶液为20%乙醇)，通风、干燥、清洁的地方。不能冷冻。
2：用过的柱子贮存在4°C(20%乙醇)。
3：本产品避免与氧化剂接触;避免长时间暴露在空气中。
2：用过的柱子贮存在4°C(20%乙醇)。
3：本产品避免与氧化剂接触;避免长时间暴露在空气中。
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危害声明：
安全说明：
搜索质检报告(COA)
参考文献 & 客户发表文献
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质量 (g) = 浓度 (mol/L) x 体积 (L) x 分子量 (g/mol)
摩尔浓度计算公式
用本工具协助配置特定浓度的溶液，使用的计算公式为：
开始浓度 x 开始体积 = 最终浓度 x 最终体积
稀释公式
稀释公式一般简略地表示为：C1V1 = C2V2 ( 输入 输出 )
