产品简介：
本产品采用改进SDS-碱裂解法裂解细胞，粗提物通过独特的内毒素清除剂选择性结合离心除去内毒素，然后离心吸附柱内的硅基质膜在高盐、低pH值状态下选择性地结合溶液中的质粒DNA，再通过漂洗液将杂质和其它细菌成分去除，最后低盐、高pH值的洗脱缓冲液将纯净质粒DNA从硅基质膜上洗脱。
操作步骤：
第一次使用前请先在漂洗液WB瓶和去蛋白液PE瓶中按标签指示加入无水乙醇，充分混匀，加入后请及时在方框打钩标记已加入乙醇，以免多次加入。
将RNaseA全部加入溶液P1中，混匀。每次使用后置于2-8°C保存。
1：取150-200ml(最多不超过300ml)过夜培养的菌液加入50ml离心管，8,000×g(约9,000rpm)，离心1min，尽可能的倒干上清，收集菌体。
如使用50ml离心管，可以离心弃上清后，在同一个50ml管内加入更多的菌液，重复步骤1，直到收集到足够的菌体。
2：加7.5ml溶液P1重悬菌体沉淀，移液器吹打或者涡旋振荡至彻底悬浮。
如果有未彻底混匀的菌块，会影响裂解，导致提取量和纯度偏低。
3：加7.5ml的溶液P2，温和地上下翻转6-8次使菌体充分裂解，室温放置4-5min。
温和地混合，不要剧烈震荡，以免基因组DNA剪切断裂!所用时间不应超过5min!以免质粒受到破坏。此时菌液应变得清亮粘稠。如果很浑浊，可能由于菌体过多，裂解不彻底，应减少菌体量。
4：加7.5ml溶液N3，立即温和地上下翻转6-8次，充分混匀此时会出现白色絮状沉淀。8,000×g离心10min，小心吸取上清至新管，避免吸取到漂浮的白色沉淀。
加入溶液N3后应该立即混匀，以免产生SDS的局部沉淀。
如有漂浮白色沉淀，可用吸头撇开浮沫伸入液面下吸取，偶然吸到少量漂浮的白色沉淀也不影响实验结果，后续过滤漂洗过程中都会去除。
5：加入0.1体积(上清的体积的10%，约2.4ml)的内毒素清除剂到上一步所得上清，颠倒旋转混匀。
6：向第5步得到的上清中加入0.5倍体积异丙醇(约11ml)后充分颠倒混匀后，分多次转移混合液至吸附柱DC中，8,000×g离心1min，弃滤液。
个别情况下离心机转子倾角较大，建议每次加入吸附柱的溶液体积为10m(l不超过，以防产生漏液现象)。直到所有混合溶液通过此吸附柱。
7：加入10ml去蛋白液PE(请先检查是否已加入无水乙醇!)，8,000×g离心1min，弃滤液。
8：加入10ml漂洗液WB(请先检查是否已加入无水乙醇!)，8,000×g离心1min，弃滤液。再加入10ml漂洗液WB，重复漂洗一次，弃滤液。
9：将空吸附柱放回收集管中，8,000×g离心3min以干燥基质膜上残留乙醇。
该步骤为彻底去除吸附柱中残留乙醇，残留乙醇抑制下游反应并降低洗脱效率，降低质粒产量。
10：将吸附柱置于新的50ml离心管中，室温晾干2-3min，在吸附膜的中间部位加1ml-2ml洗脱缓冲液EB(洗脱缓冲液事先在65-75°C水浴中预热可提高产量)，室温放置2min，8,000×g离心1min，弃吸附柱。
推荐:为了增加质粒的回收效率，可将得到的溶液重新加入离心吸附柱中，室温放置1min，8,000×g离心1min。洗脱两遍可提高浓度约10%。
洗脱体积越大，洗脱效率越高，如果需要质粒浓度较高，可以适当减少洗脱体积，但是需注意体积过小降低质粒洗脱效率，减少质粒产量(最小不应少于0.8ml)。
附录:增强型内毒素清除步骤
如果用户需要转染的是原代培养细胞等比较娇嫩脆弱的细胞系或者其它公司无内毒素提取后转染效果不佳的困难细胞系，推荐加做以下增强型内毒素清除步骤，以便进一步更彻底的清除内毒素，达到最佳转染效果!
1：接前面操作步骤5，将加入0.1体积内毒素清除剂混匀后的上清，冰浴(或放入冰箱冷冻室)5min直到浑浊变清亮透明(或仍旧稍有浑浊)，中间可以充分颠倒混匀1次。
内毒素清除剂加入上清后，可能会短暂浑浊，但是冰浴后应恢复清亮(或稍浑浊)。
2：常温放置3-5min，温度恢复室温溶液很快变为浑浊，颠倒混匀。
如室内温度较低或想加快速度可以在37-42°C水浴，将很快变浑浊，颠倒混匀。
3：室温8,000×g离心10min分相。上层水相含质粒DNA，下层蓝色油状相含内毒素和其它杂质。将含DNA的上层水相转移到新管(注意不要吸到蓝色油状层，里面含内毒素等杂质)，弃油状层。
4：向第3步得到的上清中加入0.5倍体积异丙醇(约11ml)后充分颠倒混匀后接前面操作步骤6分多次转移混合液至吸附柱DC中，完成后续操作步骤。
将RNaseA全部加入溶液P1中，混匀。每次使用后置于2-8°C保存。
1：取150-200ml(最多不超过300ml)过夜培养的菌液加入50ml离心管，8,000×g(约9,000rpm)，离心1min，尽可能的倒干上清，收集菌体。
如使用50ml离心管，可以离心弃上清后，在同一个50ml管内加入更多的菌液，重复步骤1，直到收集到足够的菌体。
2：加7.5ml溶液P1重悬菌体沉淀，移液器吹打或者涡旋振荡至彻底悬浮。
如果有未彻底混匀的菌块，会影响裂解，导致提取量和纯度偏低。
3：加7.5ml的溶液P2，温和地上下翻转6-8次使菌体充分裂解，室温放置4-5min。
温和地混合，不要剧烈震荡，以免基因组DNA剪切断裂!所用时间不应超过5min!以免质粒受到破坏。此时菌液应变得清亮粘稠。如果很浑浊，可能由于菌体过多，裂解不彻底，应减少菌体量。
4：加7.5ml溶液N3，立即温和地上下翻转6-8次，充分混匀此时会出现白色絮状沉淀。8,000×g离心10min，小心吸取上清至新管，避免吸取到漂浮的白色沉淀。
加入溶液N3后应该立即混匀，以免产生SDS的局部沉淀。
如有漂浮白色沉淀，可用吸头撇开浮沫伸入液面下吸取，偶然吸到少量漂浮的白色沉淀也不影响实验结果，后续过滤漂洗过程中都会去除。
5：加入0.1体积(上清的体积的10%，约2.4ml)的内毒素清除剂到上一步所得上清，颠倒旋转混匀。
6：向第5步得到的上清中加入0.5倍体积异丙醇(约11ml)后充分颠倒混匀后，分多次转移混合液至吸附柱DC中，8,000×g离心1min，弃滤液。
个别情况下离心机转子倾角较大，建议每次加入吸附柱的溶液体积为10m(l不超过，以防产生漏液现象)。直到所有混合溶液通过此吸附柱。
7：加入10ml去蛋白液PE(请先检查是否已加入无水乙醇!)，8,000×g离心1min，弃滤液。
8：加入10ml漂洗液WB(请先检查是否已加入无水乙醇!)，8,000×g离心1min，弃滤液。再加入10ml漂洗液WB，重复漂洗一次，弃滤液。
9：将空吸附柱放回收集管中，8,000×g离心3min以干燥基质膜上残留乙醇。
该步骤为彻底去除吸附柱中残留乙醇，残留乙醇抑制下游反应并降低洗脱效率，降低质粒产量。
10：将吸附柱置于新的50ml离心管中，室温晾干2-3min，在吸附膜的中间部位加1ml-2ml洗脱缓冲液EB(洗脱缓冲液事先在65-75°C水浴中预热可提高产量)，室温放置2min，8,000×g离心1min，弃吸附柱。
推荐:为了增加质粒的回收效率，可将得到的溶液重新加入离心吸附柱中，室温放置1min，8,000×g离心1min。洗脱两遍可提高浓度约10%。
洗脱体积越大，洗脱效率越高，如果需要质粒浓度较高，可以适当减少洗脱体积，但是需注意体积过小降低质粒洗脱效率，减少质粒产量(最小不应少于0.8ml)。
附录:增强型内毒素清除步骤
如果用户需要转染的是原代培养细胞等比较娇嫩脆弱的细胞系或者其它公司无内毒素提取后转染效果不佳的困难细胞系，推荐加做以下增强型内毒素清除步骤，以便进一步更彻底的清除内毒素，达到最佳转染效果!
1：接前面操作步骤5，将加入0.1体积内毒素清除剂混匀后的上清，冰浴(或放入冰箱冷冻室)5min直到浑浊变清亮透明(或仍旧稍有浑浊)，中间可以充分颠倒混匀1次。
内毒素清除剂加入上清后，可能会短暂浑浊，但是冰浴后应恢复清亮(或稍浑浊)。
2：常温放置3-5min，温度恢复室温溶液很快变为浑浊，颠倒混匀。
如室内温度较低或想加快速度可以在37-42°C水浴，将很快变浑浊，颠倒混匀。
3：室温8,000×g离心10min分相。上层水相含质粒DNA，下层蓝色油状相含内毒素和其它杂质。将含DNA的上层水相转移到新管(注意不要吸到蓝色油状层，里面含内毒素等杂质)，弃油状层。
4：向第3步得到的上清中加入0.5倍体积异丙醇(约11ml)后充分颠倒混匀后接前面操作步骤6分多次转移混合液至吸附柱DC中，完成后续操作步骤。
产品特点：
1：离心吸附柱内硅基质膜全部采用特制吸附膜，柱与柱之间吸附量差异极小，可重复性好。克服了国产试剂盒膜质量不稳定的弊端。
2：不需要使用有毒的苯酚，氯仿等试剂，也不需要乙醇沉淀。快速，方便，从150-300ml大肠杆菌LB((Luria-Bertani)培养液中，可快速提取0.5-2mg纯净的高拷贝质粒DNA，提取率达80-90%。
3：独特工艺配方清除内毒素，内毒素含量极低(<0.1EU/μgDNA)，细胞转染效果极佳。也可直接用于酶切、转化、PCR、体外转录、测序、等各种分子生物学实验。
2：不需要使用有毒的苯酚，氯仿等试剂，也不需要乙醇沉淀。快速，方便，从150-300ml大肠杆菌LB((Luria-Bertani)培养液中，可快速提取0.5-2mg纯净的高拷贝质粒DNA，提取率达80-90%。
3：独特工艺配方清除内毒素，内毒素含量极低(<0.1EU/μgDNA)，细胞转染效果极佳。也可直接用于酶切、转化、PCR、体外转录、测序、等各种分子生物学实验。
组分：
| 组分 | 规格10T | 储存 |
| RNaseA(10mg/ml) | 750μl | 4℃ |
| 溶液P1 | 77mL | 4℃ |
| 溶液P2 | 77mL | RT |
| 溶液N3 | 77mL | RT |
| 内毒素清除剂 | 25mL | 4℃ |
| 去蛋白液PE(第一次使用前按说明加指定量乙醇) | 64mL | RT |
| 漂洗液WB(第一次使用前按说明加指定量乙醇) | 50mL | RT |
| 洗脱缓冲液EB | 20mL | RT |
| 吸附柱DC | 10EA | RT |
| 收集管(50mL) | 10EA | RT |
保存条件：
室温运输，按说明书保存。
注意事项：
一：储存注意事项
1：RNaseA保存在即用型甘油缓冲液中，常温运输，收到后，不超过25°C室温至少保存6个月，4°C保存12个月，长期保存放-20°C。
2：第一次使用时，可将试剂盒所带全部的RNaseA加入溶液P1后(终浓度100μg/ml)置于4°C可保存3个月左右。如果溶液P1中RNaseA时间较久失活了，提取的质粒可能有微量RNA残留，在溶液P1中补加RNaseA即可。
3：环境温度低时溶液P2中SDS可能会析出，出现浑浊或者沉淀，可在37°C水浴加热几分钟即可恢复澄清，重新混匀，不要剧烈摇晃，以免形成过量的泡沫。
二：其他注意事项
1：所有的离心步骤如未加另外说明均在室温完成，使用转速可以达到8,000×g(约9,000rpm)，带50ml转头的台式离心机。
2：提取的质粒量与细菌培养浓度、质粒拷贝数等因素有关。如果所提质粒为低拷贝质粒或大于10Kb的大质粒，应加大菌体使用量，同时按比例增加P1、P2、N3的用量，洗脱缓冲液应在70°C预热。可以适当的延长吸附和洗脱的时间，以增加提取效率。
3：得到的质粒DNA可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。OD260值为1相当于大约50μg/mlDNA。电泳可能为单一条带，也可能为2条或者多条DNA条带，这主要是不同程度的超螺旋构象质粒泳动位置不一造成，与提取物培养时间长短、提取时操作剧烈程度等有关。本公司产品正常操作情况下基本超螺旋可以超过90%。
4：质粒DNA确切分子大小，必须酶切线性化后，对比DNA分子量Marker才可以知道。处于环状或者超螺旋状态的的质粒，泳动位置不确定，无法通过电泳知道其确切大小。
1：RNaseA保存在即用型甘油缓冲液中，常温运输，收到后，不超过25°C室温至少保存6个月，4°C保存12个月，长期保存放-20°C。
2：第一次使用时，可将试剂盒所带全部的RNaseA加入溶液P1后(终浓度100μg/ml)置于4°C可保存3个月左右。如果溶液P1中RNaseA时间较久失活了，提取的质粒可能有微量RNA残留，在溶液P1中补加RNaseA即可。
3：环境温度低时溶液P2中SDS可能会析出，出现浑浊或者沉淀，可在37°C水浴加热几分钟即可恢复澄清，重新混匀，不要剧烈摇晃，以免形成过量的泡沫。
二：其他注意事项
1：所有的离心步骤如未加另外说明均在室温完成，使用转速可以达到8,000×g(约9,000rpm)，带50ml转头的台式离心机。
2：提取的质粒量与细菌培养浓度、质粒拷贝数等因素有关。如果所提质粒为低拷贝质粒或大于10Kb的大质粒，应加大菌体使用量，同时按比例增加P1、P2、N3的用量，洗脱缓冲液应在70°C预热。可以适当的延长吸附和洗脱的时间，以增加提取效率。
3：得到的质粒DNA可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。OD260值为1相当于大约50μg/mlDNA。电泳可能为单一条带，也可能为2条或者多条DNA条带，这主要是不同程度的超螺旋构象质粒泳动位置不一造成，与提取物培养时间长短、提取时操作剧烈程度等有关。本公司产品正常操作情况下基本超螺旋可以超过90%。
4：质粒DNA确切分子大小，必须酶切线性化后，对比DNA分子量Marker才可以知道。处于环状或者超螺旋状态的的质粒，泳动位置不确定，无法通过电泳知道其确切大小。
UN码：
HazardClass：
危害声明：
安全说明：
搜索质检报告(COA)
参考文献 & 客户发表文献
本计算器可帮助您计算出特定溶液中溶质的质量、溶液浓度和体积之间的关系，公式为：
质量 (g) = 浓度 (mol/L) x 体积 (L) x 分子量 (g/mol)
摩尔浓度计算公式
用本工具协助配置特定浓度的溶液，使用的计算公式为：
开始浓度 x 开始体积 = 最终浓度 x 最终体积
稀释公式
稀释公式一般简略地表示为：C1V1 = C2V2 ( 输入 输出 )
