产品简介:
本产品可以有效清除gDNA 残留,得到的RNA一般不需要DNase消化,可用于反转录PCR、荧光定量PCR等实验。独特的裂解液迅速裂解细胞和灭活细胞 RNA 酶, 离心沉淀去除多糖多酚和次级代谢产物,经裂解混合物用乙醇调节 RNA 结合吸附到基因组DNA清除柱,然后RNA被选择性洗脱滤过, 吸附在基因组 DNA 清除柱上的残留 DNA 无法洗脱连同柱子一起丢弃从而清除掉 DNA。滤过的 RNA 用乙醇调节 结合条件后,RNA 在高离序盐状态下选择性吸附于离心柱内硅基质膜,再通过一系列快速的漂洗-离心的步骤,去蛋白液和漂洗液 将细胞代谢物,蛋白等杂质去除, 最后低盐的 RNase free H2O 将纯净 RNA 从硅基质膜上洗脱。
操作步骤:
实验前准备:取1ml裂解液 CLB至离心管内 (如果CLB有析出或者沉淀需先置于65°C水浴重新溶解),在裂解液CLB中加入5% β-巯基乙醇(1ml CLB加50μl β-巯基乙醇)。颠倒混匀后65°C水浴中预热。多个样品按照比例放大准备。
一:直接研磨法(实验室无液氮情况下或者柔软易研磨植物样品推荐此法):
1:新鲜植物组织或者冰冻保存样品称重后取 100-200mg(水分少的样品如叶片种子等可100-150mg,水分多的样品如草莓西瓜果实可多加一些)迅速剪成小块放入研钵,加入 1ml CLB(已加有β-巯基乙醇)室温下充分研磨成匀浆,注意应该迅速研磨让组织和裂解液 CLB 立刻充分接触以抑制 RNA 酶活性。
注意:β-巯基乙醇是裂解液 CLB 的关键成分,必要的时候可以提高终浓度到 10-20%。如果特别复杂植物,可以尝试在裂解液中加入 PVP40 至终浓度 2%。
2:将裂解物转入离心管,立即剧烈振荡 15 秒,短时放回 65°C 水浴中(5-10 min),中间偶尔颠倒 1-2 次帮助裂解。13,000rpm 离 心 10 分钟,沉淀不能裂解的碎片。
3:取裂解物上清(在不超过基因组 DNA 清除柱能力的情况下可以取更多的上清,这样可以提高产量)转到一个新离心管。加入上 清体积一半的无水乙醇(0.5 体积),此时可能出现沉淀,但是不影响提取过程,立即吹打混匀,不要离心。
注意:若上清表面有漂浮物,用吸头挑开吸取下面液体即可。
4:立刻接操作步骤的步骤三。
二:液氮研磨法(适用广泛,提取复杂难破碎,易降解样品时推荐此法)
1:液氮中研磨新鲜或-70°C 冷冻的材料至细粉。
2:转移100-200mg 细粉(水分少的样品如叶片种子等可加 100-150mg,水分多的样品如草莓西瓜果实可多加一些)加至预热的裂 解液 CLB(已加有β-巯基乙醇)离心管中。立即剧烈涡旋 30-60 秒或者用吸头吹打混匀裂解直得到满意匀浆结果(或者电动匀浆 30 秒),可以剪切 DNA,降低粘稠度和提高产量。
3:短时放回 65°C 水浴中(5-10 min),中间偶尔颠倒 1-2 次帮助裂解。
4:将裂解物 13,000 rpm 离心 10 分钟,沉淀不能裂解的碎片。
5:取裂解物上清(在不超过基因组 DNA 清除柱能力的情况下可以取更多的上清,这样可以提高产量)转到一个新离心管。加入上 清体积一半的无水乙醇(0.5 体积),此时可能出现沉淀,但是不影响提取过程,立即吹打混匀,不要离心。
注意:若上清表面有漂浮物,用吸头挑开吸取下面液体即可。
6:立刻接操作步骤的步骤 3。
三:将混合物(每次小于 720μl,多可以分两次加入)加入一个基因组清除柱中,13,000 rpm 离心2分钟,弃掉废液。
注意:确保离心后液体全部滤过去,膜上没有残留,如有必要,可以加大离心力和离心时间。
四:将基因组 DNA 清除柱子放在一个干净 2ml 离心管内(不用 RNAse free 或者 DEPC 处理,一般干净的新离心管即可。也可使用 RNA 吸附柱配套的新的干净收集管),在基因组清除柱内加 500μl 裂解液 RLT Plus,13,000 rpm 离心 30 秒, 收集滤液(RNA 在 滤液中),用微量移液器较精确估计滤过液体积(通常为 450-500μl 左右,滤过时候损失体积应该减去),加入 0.5 倍体积的无水乙 醇,此时可能出现沉淀,但是不影响提取过程,立即吹打混匀,不要离心。
五:立刻将混合物(每次小于 720μl,多可以分两次加入)加入一个吸附柱 RA 中,(吸附柱放入收集管中)13,000 rpm 离心2分钟,弃掉 废液。
注意:确保离心后液体全部滤过去,膜上没有残留,如有必要,可以加大离心力和离心时间
六:加 700μl 去蛋白液 RW1,室温放置 1 分钟,13,000rpm 离心 30 秒,弃掉废液。
七:加入 500μl 漂洗液 RW(请先检查是否已加入无水乙醇!),13,000 rpm 离心 30 秒,弃掉废液。加入 500μl 漂洗液 RW,重复一遍。
八:将吸附柱 RA 放回空收集管中,13,000 rpm 离心 2 分钟,尽量除去漂洗液, 以免漂洗液中残留乙醇抑制下游反应。
九:取出吸附柱RA,放入一个RNasefree离心管中,根据预期RNA产量在吸附膜的中间部位加30-50μlRNase-FreeH2O(事先在 70 ̊C 水浴中加热可提高产量), 室温放置 1 分钟,12,000 rpm 离心 1 分钟。
十:如果预期 RNA 产量>30μg,加 30-50μl RNase-Free H2O 重复步骤 9,合并两次洗液,或者使用第一次的洗脱液加回到吸附柱重 复步骤一遍(如果需要 RNA 浓度高)。
注意:洗脱两遍的 RNA 洗脱液浓度高,分两次洗脱合并洗脱液的 RNA 产量比前者高 15–30%,但是浓度要低,用户根据需要选择。
一:直接研磨法(实验室无液氮情况下或者柔软易研磨植物样品推荐此法):
1:新鲜植物组织或者冰冻保存样品称重后取 100-200mg(水分少的样品如叶片种子等可100-150mg,水分多的样品如草莓西瓜果实可多加一些)迅速剪成小块放入研钵,加入 1ml CLB(已加有β-巯基乙醇)室温下充分研磨成匀浆,注意应该迅速研磨让组织和裂解液 CLB 立刻充分接触以抑制 RNA 酶活性。
注意:β-巯基乙醇是裂解液 CLB 的关键成分,必要的时候可以提高终浓度到 10-20%。如果特别复杂植物,可以尝试在裂解液中加入 PVP40 至终浓度 2%。
2:将裂解物转入离心管,立即剧烈振荡 15 秒,短时放回 65°C 水浴中(5-10 min),中间偶尔颠倒 1-2 次帮助裂解。13,000rpm 离 心 10 分钟,沉淀不能裂解的碎片。
3:取裂解物上清(在不超过基因组 DNA 清除柱能力的情况下可以取更多的上清,这样可以提高产量)转到一个新离心管。加入上 清体积一半的无水乙醇(0.5 体积),此时可能出现沉淀,但是不影响提取过程,立即吹打混匀,不要离心。
注意:若上清表面有漂浮物,用吸头挑开吸取下面液体即可。
4:立刻接操作步骤的步骤三。
二:液氮研磨法(适用广泛,提取复杂难破碎,易降解样品时推荐此法)
1:液氮中研磨新鲜或-70°C 冷冻的材料至细粉。
2:转移100-200mg 细粉(水分少的样品如叶片种子等可加 100-150mg,水分多的样品如草莓西瓜果实可多加一些)加至预热的裂 解液 CLB(已加有β-巯基乙醇)离心管中。立即剧烈涡旋 30-60 秒或者用吸头吹打混匀裂解直得到满意匀浆结果(或者电动匀浆 30 秒),可以剪切 DNA,降低粘稠度和提高产量。
3:短时放回 65°C 水浴中(5-10 min),中间偶尔颠倒 1-2 次帮助裂解。
4:将裂解物 13,000 rpm 离心 10 分钟,沉淀不能裂解的碎片。
5:取裂解物上清(在不超过基因组 DNA 清除柱能力的情况下可以取更多的上清,这样可以提高产量)转到一个新离心管。加入上 清体积一半的无水乙醇(0.5 体积),此时可能出现沉淀,但是不影响提取过程,立即吹打混匀,不要离心。
注意:若上清表面有漂浮物,用吸头挑开吸取下面液体即可。
6:立刻接操作步骤的步骤 3。
三:将混合物(每次小于 720μl,多可以分两次加入)加入一个基因组清除柱中,13,000 rpm 离心2分钟,弃掉废液。
注意:确保离心后液体全部滤过去,膜上没有残留,如有必要,可以加大离心力和离心时间。
四:将基因组 DNA 清除柱子放在一个干净 2ml 离心管内(不用 RNAse free 或者 DEPC 处理,一般干净的新离心管即可。也可使用 RNA 吸附柱配套的新的干净收集管),在基因组清除柱内加 500μl 裂解液 RLT Plus,13,000 rpm 离心 30 秒, 收集滤液(RNA 在 滤液中),用微量移液器较精确估计滤过液体积(通常为 450-500μl 左右,滤过时候损失体积应该减去),加入 0.5 倍体积的无水乙 醇,此时可能出现沉淀,但是不影响提取过程,立即吹打混匀,不要离心。
五:立刻将混合物(每次小于 720μl,多可以分两次加入)加入一个吸附柱 RA 中,(吸附柱放入收集管中)13,000 rpm 离心2分钟,弃掉 废液。
注意:确保离心后液体全部滤过去,膜上没有残留,如有必要,可以加大离心力和离心时间
六:加 700μl 去蛋白液 RW1,室温放置 1 分钟,13,000rpm 离心 30 秒,弃掉废液。
七:加入 500μl 漂洗液 RW(请先检查是否已加入无水乙醇!),13,000 rpm 离心 30 秒,弃掉废液。加入 500μl 漂洗液 RW,重复一遍。
八:将吸附柱 RA 放回空收集管中,13,000 rpm 离心 2 分钟,尽量除去漂洗液, 以免漂洗液中残留乙醇抑制下游反应。
九:取出吸附柱RA,放入一个RNasefree离心管中,根据预期RNA产量在吸附膜的中间部位加30-50μlRNase-FreeH2O(事先在 70 ̊C 水浴中加热可提高产量), 室温放置 1 分钟,12,000 rpm 离心 1 分钟。
十:如果预期 RNA 产量>30μg,加 30-50μl RNase-Free H2O 重复步骤 9,合并两次洗液,或者使用第一次的洗脱液加回到吸附柱重 复步骤一遍(如果需要 RNA 浓度高)。
注意:洗脱两遍的 RNA 洗脱液浓度高,分两次洗脱合并洗脱液的 RNA 产量比前者高 15–30%,但是浓度要低,用户根据需要选择。
产品特点:
1:离心吸附柱内硅基质膜全部采用 Whatman 特制吸附膜,柱与柱之间吸附量差异极小,可重复性好。
2:不需要苯酚,氯仿等试剂,也不需要乙醇沉淀,快速方便,一般可在 25-30 分钟内完成。
3:应用性极广,可以提取包括复杂中草药如石斛/丹参/雪莲/人参、复杂淀粉种子如水稻/小麦/玉米种子、复杂果实如葡萄/蓝莓/草莓/西瓜果实、复杂抗逆植物如冬青/松针/沙棘/胡杨、复杂花卉月季/梅/牡丹花、复杂多糖植物紫菜/仙人掌/芦荟水稻种子等数百种样品。
4:基因组 DNA 清除柱技术可以有效清除 gDNA 残留,得到的 RNA 一般不需要 DNase 消化,可用于反转录 PCR、荧光定量 PCR 等实验。
5:多次柱漂洗确保高纯度,OD260/OD280 典型的比值达2.0-2.2,基本无DNA残留,可用于RT-PCR,Northern-blot 和各种实验。
2:不需要苯酚,氯仿等试剂,也不需要乙醇沉淀,快速方便,一般可在 25-30 分钟内完成。
3:应用性极广,可以提取包括复杂中草药如石斛/丹参/雪莲/人参、复杂淀粉种子如水稻/小麦/玉米种子、复杂果实如葡萄/蓝莓/草莓/西瓜果实、复杂抗逆植物如冬青/松针/沙棘/胡杨、复杂花卉月季/梅/牡丹花、复杂多糖植物紫菜/仙人掌/芦荟水稻种子等数百种样品。
4:基因组 DNA 清除柱技术可以有效清除 gDNA 残留,得到的 RNA 一般不需要 DNase 消化,可用于反转录 PCR、荧光定量 PCR 等实验。
5:多次柱漂洗确保高纯度,OD260/OD280 典型的比值达2.0-2.2,基本无DNA残留,可用于RT-PCR,Northern-blot 和各种实验。
组分:
组分名称:50T
裂解液 CLB:50mL
裂解液 RLT Plus:25mL
去蛋白液 RW1:40mL
漂洗液 RW(初次使用前请按说明加入指定量的无水乙醇):10mL
RNase-Free H2O:10mL
基因组 DNA 清除套管:50EA
RNase-Free 吸附套管(RA):50EA
裂解液 CLB:50mL
裂解液 RLT Plus:25mL
去蛋白液 RW1:40mL
漂洗液 RW(初次使用前请按说明加入指定量的无水乙醇):10mL
RNase-Free H2O:10mL
基因组 DNA 清除套管:50EA
RNase-Free 吸附套管(RA):50EA
保存条件:
室温 12个月
注意事项:
1:所有的离心步骤均在室温完成(4 ̊C 离心也可以),使用转速可以达到 13,000 rpm 的传统台式离心机,如 Eppendorf 5415C 或者类似离心机。
2:需要自备β-巯基乙醇、乙醇(尽量新开封或者 RNA 专用),研钵。
3:裂解液 CLB、RLTplus 和去蛋白液 RW1 中含有刺激性化合物,操作时要戴乳胶手套,避免沾染皮肤,眼睛和衣服。若沾染皮肤、 眼睛时,要用大量清水或者生理盐水冲洗。
4:样品处理量绝对不要超过基因组清除柱 DA 和和 RNA 吸附柱 RA 处理能力,否则造成 DNA 残留或产量降低。开始摸索实验条件 时,如果不清楚样品DNA/RNA 含量时可使用较少的样品处理量,将来根据样品试验情况增加或者减少处理量。
5:一般说来任何总 RNA 提取试剂在提取过程中无法完全避免 DNA 的微量残留,本产品采取了独特的缓冲体系和选择了特殊吸附能 力的吸附膜,在大多数 RT-PCR 扩增过程中极其微量的 DNA 残留(一般电泳 EB 染色紫外灯下观察不可见)影响不是很大, 如果 要进行严格的 mRNA 表达量分析如荧光定量 PCR,建议在进行模板和引物的选择时:选用跨内含子的引物,以穿过 mRNA 中的连接区,这样 DNA 就不能作为模板参与扩增反应。选择基因组 DNA 和 cDNA 上扩增的产物大小不一样的引物对。将 RNA 提取物用 RNase-Free 的 DNase I 处理。在步骤去蛋白液 RW1 漂洗前,直接在吸附柱 RA 上进行 DNase I 处理。
2:需要自备β-巯基乙醇、乙醇(尽量新开封或者 RNA 专用),研钵。
3:裂解液 CLB、RLTplus 和去蛋白液 RW1 中含有刺激性化合物,操作时要戴乳胶手套,避免沾染皮肤,眼睛和衣服。若沾染皮肤、 眼睛时,要用大量清水或者生理盐水冲洗。
4:样品处理量绝对不要超过基因组清除柱 DA 和和 RNA 吸附柱 RA 处理能力,否则造成 DNA 残留或产量降低。开始摸索实验条件 时,如果不清楚样品DNA/RNA 含量时可使用较少的样品处理量,将来根据样品试验情况增加或者减少处理量。
5:一般说来任何总 RNA 提取试剂在提取过程中无法完全避免 DNA 的微量残留,本产品采取了独特的缓冲体系和选择了特殊吸附能 力的吸附膜,在大多数 RT-PCR 扩增过程中极其微量的 DNA 残留(一般电泳 EB 染色紫外灯下观察不可见)影响不是很大, 如果 要进行严格的 mRNA 表达量分析如荧光定量 PCR,建议在进行模板和引物的选择时:选用跨内含子的引物,以穿过 mRNA 中的连接区,这样 DNA 就不能作为模板参与扩增反应。选择基因组 DNA 和 cDNA 上扩增的产物大小不一样的引物对。将 RNA 提取物用 RNase-Free 的 DNase I 处理。在步骤去蛋白液 RW1 漂洗前,直接在吸附柱 RA 上进行 DNase I 处理。
UN码:
HazardClass:
危害声明:
安全说明:
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参考文献 & 客户发表文献
本计算器可帮助您计算出特定溶液中溶质的质量、溶液浓度和体积之间的关系,公式为:
质量 (g) = 浓度 (mol/L) x 体积 (L) x 分子量 (g/mol)
摩尔浓度计算公式
用本工具协助配置特定浓度的溶液,使用的计算公式为:
开始浓度 x 开始体积 = 最终浓度 x 最终体积
稀释公式
稀释公式一般简略地表示为:C1V1 = C2V2 ( 输入 输出 )